植物(wù)葉綠體提取試劑盒
産品編号
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産品名稱
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包裝
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RTU5001
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植物(wù)葉綠體提取試劑盒
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10次
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● 産品簡介:
葉綠體(Chloroplast)是質體的一(yī)種, 是高(gāo)等植物(wù)和一(yī)些藻類所特有的能(néng)量轉換器(qì),是光(guāng)合作用的反應場所。在高(gāo)等植物(wù)中葉綠體為(wèi)雙凸或平凸透鏡,長(cháng)徑5~10μm,短徑2~4μm,厚2~3μm。高(gāo)等植物(wù)的葉肉細胞一(yī)般含50~200個(gè)葉綠體,可占細胞質的40%,葉綠體的數目因物(wù)種細胞類型,生(shēng)态環境,生(shēng)理狀态而有所不同。葉綠體由葉綠體外被(chloroplast envelope)、類囊體(thylakoid)和基質(stroma)三部分組成,含有3種不同的膜:外膜、内膜、類囊體膜和3種彼此分開(kāi)的腔:膜間隙、基質和類囊體腔。本公司的植物(wù)葉綠體提取試劑盒采用密度梯度離心方法,可以從(cóng)多(duō)種植物(wù)中提取高(gāo)純度的葉綠體。
1.
即用型試劑盒,用戶不需要單獨配制各種溶液。
2.
試劑盒可以用于葉綠體粗提,所得葉綠體含少量其他細胞器(qì)污染,可用于後續的SDS-PAGE,Western,ELSIA和蛋白(bái)組分析。也可以用于葉綠體精提,所得葉綠體完整,可用于後續的光(guāng)合作用,電(diàn)子鏈和磷酸化,跨膜轉運,體外葉綠體蛋白(bái)合成,蛋白(bái)定位等研究。還(hái)可用于葉綠體膜,基質,類囊體的提取以及葉綠體DNA和葉綠體RNA純化。
3.
以每次處理30
g葉片計算(suàn),本産品可使用8-10次提取,每次能(néng)得到(dào)3-5
mg左右葉綠體。
4.
已經成功用于拟南(nán)芥,綠蘿,菠菜,大豆,莴筍,白(bái)菜,煙(yān)草(cǎo)和甜菜等植物(wù),還(hái)可用于更多(duō)植物(wù)(可能(néng)需要優化條件(jiàn))。
● 貯存及運輸:
4-8℃保存,至少一(yī)年(nián)有效;試劑盒常溫運輸。
● 産品組成:
産品貨号
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産品名稱
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包裝
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貯存
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RTU5001-01
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葉綠體提取緩沖液(5×)
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2×250
ml
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4-8℃
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RTU5001-02
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密度梯度分離試劑
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65
ml
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4-8℃
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RTU5001-03
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BSA
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3
g
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4-8℃
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RTU5001-04
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1
M DTT(粉末裝)
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2.5
ml
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4-8℃
配制後-20℃貯存
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RTU5001-05
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過濾紙(zhǐ)
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50張/包
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RT
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說明書
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一(yī)份
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-
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● 使用說明:
注意:葉綠體對溫度高(gāo)度敏感,所以整個(gè)操作必須在冰上(shàng)或者在冷室進行,所用器(qì)皿和溶液均需要在4℃預冷。離心時一(yī)定要在4℃進行,離心力以g而不是rpm計算(suàn)。如果需要研究葉綠體的功能(néng),提取過程還(hái)需要在昏暗(àn)的光(guāng)線條件(jiàn)下(xià)進行。
需要自(zì)備材料:
剪刀;50
ml尖底或圓底離心管;15
ml尖底或圓底離心管;漏鬥;勻漿機(jī);低(dī)溫離心機(jī)。
1.1 材料預處理:
實驗前1-2天将植物(wù)放(fàng)在暗(àn)室培養以減少葉綠體中澱粉顆粒的形成,否則離心時這些顆粒很容易使葉綠體破裂。葉片在實驗前需先用自(zì)來水(shuǐ)洗淨,再用蒸餾水(shuǐ)淋洗,去掉多(duō)餘水(shuǐ)分。如果葉片采集後不能(néng)立即處理,則保存時需要保持葉片濕潤,即使如此,葉片采集後的放(fàng)置時間也不能(néng)超過一(yī)天。
1.2
1×葉綠體提取緩沖液(即用型)配制:
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1×葉綠體提取緩沖液(即用型)
配制量200 ml
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葉綠體提取緩沖液(5×)
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40 ml
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BSA
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0.2 g
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1 M DTT
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200 μl
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滅菌水(shuǐ)
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定容至200 ml
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冰上(shàng)預冷待用,現用現配,不建議貯存
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注:一(yī)個(gè)30克樣品提取反應需要 150 ml 1×葉綠體提取緩沖液(即用型)。
1.3 葉片勻漿:
1.3.1 新鮮采集植物(wù)葉片,快速去除葉脈(約30克)并将葉片剪成1-3 cm2大小(xiǎo)的碎片并浸泡在150 ml的預冷的1×葉綠體提取緩沖液(即用型)中(每克葉片加5 ml)。
1.3.2 将浸泡了葉片的溶液轉移到(dào)勻漿機(jī)(貨号:RT-2243A)中,低(dī)速勻漿10秒(miǎo),避免起泡沫。用玻璃棒把液面的碎片按入勻漿機(jī)底部後,再低(dī)速勻漿10秒(miǎo),重複10秒(miǎo)勻漿3-4次至葉片破碎即可,不要過分勻漿,否則會(huì)降低(dī)完整葉綠體的得率。
1.3.3 用2層過濾紙(zhǐ)置于小(xiǎo)漏鬥上(shàng),将勻漿液過濾收集到(dào)預冷的250 ml量筒中,一(yī)般更換三次濾紙(zhǐ)可收集約120 ml濾液,将濾液等分到(dào)4個(gè)預冷的50 ml的塑料離心管中(每個(gè)管中的濾液不要超過35 ml)。
1.4 離心去雜(zá)質:
4℃ 200 g離心5分鍾,沉澱為(wèi)未破裂植物(wù)組織、細胞或細胞核,如果樣品中澱粉含量較高(gāo),沉澱可能(néng)為(wèi)白(bái)色。(右圖)
注:此步驟用低(dī)速離心去除雜(zá)質,不能(néng)省略,否則提取的葉綠體會(huì)有其他細胞器(qì)的污染。
1.5 收集葉綠體粗提液:
1.5.1将步驟1.4得到(dào)的上(shàng)清液平分到(dào)4個(gè)預冷的50 ml塑料離心管中。
1.5.2 4℃ 1100 g離心15分鍾,小(xiǎo)心棄上(shàng)清,沉澱含葉綠體,呈深綠色(右圖)。
1.5.3 在沉澱中加入1.5 ml 預冷的1×葉綠體提取緩沖液(即用型),手彈離心管底部使葉綠體重懸,收集4管溶液(約6 ml),此溶液即為(wèi)葉綠體粗提産物(wù)(含有破碎的葉綠體和完整的葉綠體),可直接用于後續的SDS-PAGE,Western,蛋白(bái)組分析。
注:重懸時最好避免溶液起泡,手指輕彈,不要用槍頭吹打,否則葉綠體容易破裂。
1.6 完整葉綠體的純化:
葉綠體重懸液配制
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葉綠體重懸液
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配制量20 ml
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葉綠體提取緩沖液(5×)
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4 ml
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滅菌水(shuǐ)
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16 ml
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冰上(shàng)預冷待用,現用現配,不建議貯存
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1.6.1 單梯度分離法(适合菠菜,白(bái)菜,莴苣,拟南(nán)芥,綠蘿等):
1.6.1.1 40%密度梯度液配制-10 ml:
在15 ml離心管中加入6 ml 1×葉綠體提取緩沖液(即用型)和4 ml密度梯度分離試劑,充分混合均勻,得40%密度梯度液,冰浴備用。
1.6.1.2将10 ml 40%密度梯度液平分到(dào)2個(gè) 15 ml離心管中,每管5 ml;将步驟1.5.3得到(dào)的葉綠體粗提液3 ml小(xiǎo)心鋪在5 ml密度梯度液之上(shàng);另一(yī)管重複。(5 ml 40%密度梯度液用可以分離3 ml 葉綠體粗提液,其他體積以此比例換算(suàn))。
1.6.1.3 4℃ 3200 g離心15分鍾,綠色沉澱為(wèi)完整葉綠體(右圖)。
注:如果最上(shàng)層的分離試劑不夠清亮,可以延長(cháng)離心20分鍾。
1.6.1.4 小(xiǎo)心棄上(shàng)清,保留沉澱,每管沉澱中加入1 ml 葉綠體重懸液,輕柔重懸,可以收集到(dào)2 ml完整葉綠體溶液。
1.6.2雙梯度分離法(适合煙(yān)草(cǎo),甜菜,豌豆等):
1.6.2.1 80%密度梯度重液配制-4 ml:
在15 ml離心管中加入0.8 ml 1×葉綠體提取緩沖液(即用型)和3.2 ml 密度梯度分離試劑,充分混合均勻,得80%密度梯度重液。
1.6.2.2 40%密度梯度輕液配制-8 ml:
在另一(yī)15 ml離心管加入4.8 ml 1×葉綠體提取緩沖液(即用型)和3.2 ml 密度梯度分離試劑,充分混合均勻,得40%密度梯度輕液。
1.6.2.3 取一(yī)隻15 ml離心管,加入1.86 ml 80%密度梯度重液,随後取3.74 ml 40%密度梯度輕液小(xiǎo)心鋪在80%密度梯度重液之上(shàng),冰浴備用;然後取步驟1.5.3得到(dào)的3 ml葉綠體粗提液小(xiǎo)心鋪在密度梯度輕液之上(shàng)。另一(yī)管重複。
注:每5.6 ml
40%/80%密度梯度液可以分離3 ml 葉綠體粗提液;其他體積按照(zhào)比例調整。
1.6.2.4 4℃ 3200 g離心15分鍾,上(shàng)層綠色帶含破碎的葉綠體、線粒體和核糖體等,重液和輕液間的綠色帶為(wèi)完整葉綠體(右圖)。
注:如果最上(shàng)層的分離試劑不夠清亮,可以延長(cháng)離心20分鍾。
1.6.2.5 重懸葉綠體:
用廣口吸管小(xiǎo)心将重液和輕液之間的綠色帶(完整葉綠體)轉移到(dào)新的15 ml離心管中,加入三倍體積預冷的葉綠體重懸液,輕柔混勻。
1.6.2.6 離心收集葉綠體:
4℃ 1750 g離心6分鍾,小(xiǎo)心将上(shàng)清倒出後,在綠色的葉綠體沉澱中加入預冷的0.5 ml葉綠體重懸液,手指輕彈管底使葉綠體重懸。最終可以收集到(dào)1
ml完整葉綠體溶液。
1.7 葉綠體貯存:
葉綠體可在顯微鏡下(xià)檢查葉綠體完整性。葉綠體重懸液避光(guāng)-80℃保存。葉綠體必須盡快使用,否則非常容易失去活性。所得精提葉綠體可用于後續的光(guāng)合作用,電(diàn)子鏈和磷酸化,跨膜轉運,體外葉綠體蛋白(bái)合成,蛋白(bái)定位等研究。還(hái)可用于葉綠體膜,基質,類囊體提取以及葉綠體DNA和葉綠體RNA純化實驗等。
1.8 葉綠素含量測定:
通(tōng)常葉綠體含量用單位葉綠素含量來表示,即x
mg 葉綠素/ml 葉綠體懸浮液。
1.8.1
取10 μl 葉綠體懸浮液加入到(dào)990
μl 80%丙酮溶液中,混勻。
1.8.2
3000 g 離心5分鍾,取上(shàng)清測定OD652 吸光(guāng)值,用80%丙酮做空白(bái)對照(zhào)。
1.8.3
根據以下(xià)公式計算(suàn)葉綠素:
葉綠素濃度(mg/ml)=(OD652×100)/36
100:稀釋倍數
36:extinction
coefficient in ml/cm·mg
1.9 實驗示例:
30克綠蘿葉片,加入150
ml 1×葉綠體提取緩沖液(即用型)勻漿5×10秒(miǎo),3次過濾共收集120
ml過濾液,平分4管,4℃ 1100
g 離心15 min,棄上(shàng)清,每管重懸于1.5
ml 1×葉綠體提取緩沖液(即用型)中,共得到(dào)6
ml 葉綠體粗提液。2×3
ml 粗提液平鋪于2×5
ml 40%密度梯度液之上(shàng),4℃ 3200 g離心15分鍾,棄上(shàng)清,每管沉澱重懸于1 ml 葉綠體重懸液中,共得到(dào)2 ml精制葉綠體重懸液,測定葉綠素含量為(wèi)3.43 mg/ml重懸液。30克葉片提取得到(dào)6.86 mg葉綠體。取10
μl葉綠體溶液稀釋20倍,取50 μl稀釋液顯微鏡40倍物(wù)鏡觀察,如右圖。
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metabolic P fractions and Rubisco activity.
實驗植物(wù):油菜
Author: Jinyao Yan, Xiaolei Ye, Yi Song,
Tao Ren, Chongming Wang, Xiaokun Li, Rihuan Cong, Zhifeng Lu,Jianwei Lu.
Journal: The Plant Journal (2023) 113, 416–429
Institution: Huazhong
Agricultural University
Paper link: https://doi.org/10.1111/tpj.16057